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五分鐘了解//自噬LC3雙標腺病毒

時間:2024-04-22 熱度:15
Q
什么是細胞自噬?

A: 自噬是細胞內的一種“自食(Self-eating)”的現象,凋亡是“自殺(Self-killing)”的現象,二者共用相同的刺激因素和調節蛋白,但是誘發閾值和門檻不同,如何轉換和協調目前還不清楚. 自噬是指膜(目前來源還有爭議,大部分表現為雙層膜,有時多層或單層)包裹部分胞質和細胞內需降解的細胞器、蛋白質等形成自噬體(autophagosome),最后與溶酶體融合形成自噬溶酶體(autophagolysosome),降解其所包裹的內容物,以實現細胞穩態和細胞器的更新。




細胞自噬分類


目前根據發生過程分為三類:Macroautophagy,Microautophagy和Chaperone-mediated autophagy CMA)。


01

大自噬(Macroautophagy)

細胞的整個區域被包圍在雙膜小泡的自噬體中,這些自噬體然后與溶酶體融合成為自噬溶酶體,其內容物隨后被其中的蛋白酶降解。即我們說的自噬(autophagy)

02

微自噬(Microautophagy)

是指溶酶體主動、直接吞噬胞漿成分的一種方式。

03

分子伴侶介導的自噬(Chaperone-mediated autophagy,CMA)

一些分子伴侶,如hsp70,能幫助未折疊蛋白轉位入溶酶體。通常說的自噬泛指Macroautophagy。



自噬的步驟

步驟1細胞接受自噬誘導信號后,在胞漿的某處形成一個小的類似“脂質體”樣的膜結構,然后不斷擴張,但它并不呈球形,而是扁平的,就像一個由2層脂雙層組成的碗,可在電鏡下觀察到,被稱為Phagophore,是自噬發生的鐵證之一。

步驟2:Phagophore不斷延伸,將胞漿中的任何成分,包括細胞器,全部攬入“碗”中,然后“收口”,成為密閉的球狀的autophagosome,我把它翻譯為“自噬體”。電鏡下觀察到自噬體是自噬發生的鐵證之二。有2個特征:一是雙層膜,二是內含胞漿成分,如線粒體、內質網碎片等。

步驟3:自噬體形成后,可與細胞內吞的吞噬泡、吞飲泡和內體融合(這種情況不是必然要發生的)。

步驟4:自噬體與溶酶體融合形成autolysosome,期間自噬體的內膜被溶酶體酶降解,2者的內容物合為一體,自噬體中的“貨物”也被降解,產物(氨基酸、脂肪酸等)被輸送到胞漿中,供細胞重新利用,而殘渣或被排出細胞外或滯留在胞漿中。


自噬的研究方法

宣尊生物已開發并完善了多套自噬相關的研究體系和工具,并積累了豐富的自噬研究經驗。
 

正常培養的細胞自噬活性很低,不適于觀察,因此,必須對自噬進行人工干預和調節,常用的工具藥有:


(一)自噬誘導劑
1)Bredeldin A / Thapsigargin / Tunicamycin :模擬內質網應激
2)Carbamazepine/ L-690,330/ Lithium Chloride(氯化鋰):IMPase 抑制劑(即Inositol monophosphatase,肌醇單磷酸酶)
3)Earle's平衡鹽溶液:制造饑餓
4)N-Acetyl-D-sphingosine(C2-ceramide):Class I PI3K Pathway抑制劑
5)Rapamycin:mTOR抑制劑(這是最常用的)

6)Xestospongin B/C:IP3R阻滯劑


(二)自噬抑制劑
1)3-Methyladenine(3-MA):(Class III PI3K)hVps34 抑制劑
2)Bafilomycin A1:質子泵抑制劑

3)Hydroxychloroquine(羥氯喹)


除了選用上述工具藥外,一般還需結合遺傳學技術對自噬相關基因進行干預:包括反義RNA干擾技術(Knockdown)、突變株篩選、外源基因導入等。


細胞經誘導或抑制后,需對自噬過程進行觀察和檢測,常用的策略和技術有:
1)觀察自噬體的形成

由于自噬體屬于亞細胞結構,普通光鏡下看不到,因此,直接觀察自噬體需在透射電鏡下。Phagophore的特征為:新月狀或杯狀,雙層或多層膜,有包繞胞漿成分的趨勢。自噬體(AV1)的特征為:雙層或多層膜的液泡狀結構,內含胞漿成分,如線粒體、內質網、核糖體等。自噬溶酶體(AV2)的特征為:單層膜,胞漿成分已降解。(autophagic vacuole,AV)


2)在熒光顯微鏡下采用GFP-LC3等融合蛋白來示蹤自噬形成:(常用)
GFP-LC3單熒光指示體系:由于電鏡耗時長,不利于監測(Monitoring)自噬形成。我們利用LC3在自噬形成過程中發生聚集的現象開發出了GFP-LC3指示技術:無自噬時,GFP-LC3融合蛋白彌散在胞漿中;自噬形成時,GFP-LC3融合蛋白轉位至自噬體膜,在熒光顯微鏡下形成多個明亮的綠色熒光斑點,一個斑點相當于一個自噬體,可以通過計數來評價自噬活性的高低。宣尊生物已開發出高效的評價用GFP-LC3病毒載體,通過瞬時高效感染細胞,配合活細胞工作站成功評價自噬流。
 
mRFP-GFP-LC3雙熒光指示體系:mRFP用于標記及追蹤LC3,GFP的減弱可指示溶酶體與自噬小體的融合形成自噬溶酶體,即由于GFP熒光蛋白對酸性敏感,當自噬體與溶酶體融合后GFP熒光發生淬滅,此時只能檢測到紅色熒光。
 
我們在顯微鏡成像后紅綠熒光merge后通過merge后出現的黃色斑點即只是自噬體.紅色的斑點指示自噬溶酶體,通過不同顏色斑點的計數可以清晰的看出自噬流的強弱.
 
如下圖:細胞轉染mRFP-GFP-LC3病毒后給予氨基酸剝奪處理2小時后出現明顯增強的自噬以及自噬流.
 
 
3)利用Western Blot檢測LC3-II/I比值的變化以評價自噬形成:
自噬形成時,胞漿型LC3(即LC3-I)會酶解掉一小段多肽,轉變為(自噬體)膜型(即LC3-II),因此,LC3-II/I比值的大小可估計自噬水平的高低。
(Note:LC3抗體對LC3-II有更高的親和力,會造成假陽性。方法2和3需結合使用,同時需考慮溶酶體活性的影響。)
 

4) 利用Western Blot檢測p62蛋白來評價自噬以及自噬流的強弱:

起初自噬所降解的底物被認為是隨機的,但是后來的研究表明有些蛋白是seletively降解的,在這些蛋白之中研究的最為透徹的是蛋白p62,p62 is selectively incorporated into autophagosomes through direct binding to LC3 and is efficiently degraded by autophagy ; thus, the total cellular expression levels of p62 inversely correlate with autophagic activity. (一般情況下p62蛋白水平的多少與自噬流的強弱有著反比例關系)



END

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